控制菌檢查法

供試品的控制菌檢查應按已驗證的方法進行，增菌培養(yǎng)基的實際用量同控制菌檢查方法的驗證。

陽性對照試驗 供試品進行控制菌檢查時，應做陽性對照試驗。陽性對照試驗的加菌量為10~100cfu，方法同供試品的控制菌檢查。陽性對照試驗應檢出相應的控制菌。

陰性對照試驗 取稀釋液 10m1 照相應控制菌檢查法檢查，作為陰性對照。陰性對照應無菌生長。

陰性對照試驗 取稀釋液10m1照相應控制菌檢查法檢查，作為陰性對照。陰性對照應無菌生長。

控制菌檢查采用培養(yǎng)基稀釋法時，可加大增菌培養(yǎng)基的用量。

基本程序∶

供試液制備 → 增菌培養(yǎng) → 選擇性培養(yǎng)基培養(yǎng) → 挑取疑似菌落 → 生化試驗 → 報告結果

1.大腸菌群的檢查

取含適量（不少于 10m1）的膽鹽乳糖發(fā)酵培養(yǎng)基管3支，分別加入1∶10 的供試液lml（含供試品0.1g 或0.1m1）、1∶100的供試液lml（含供試品0.01g或0.OIml）、1∶1000的供試液lml（含供試品0.001g 或0.001ml），另取1支膽鹽乳糖發(fā)酵培養(yǎng)基管加入稀釋液lml作為陰性對照管。培養(yǎng) 18～24小時。

膽鹽乳糖發(fā)酵管若無菌生長、或有菌生長但不產酸產氣，判該管未檢出大腸菌群;若產酸產氣，應將發(fā)酵管中的培養(yǎng)物分別劃線接種于曙紅亞甲藍瓊脂培養(yǎng)基或麥康凱瓊脂培養(yǎng)基的平板上，培養(yǎng)18～24 小時。

若平板上無菌落生長，或生長的菌落與表2所列的菌落形態(tài)特征不符或為非革蘭陰性無芽孢桿菌，判該管未檢出大腸菌群;若平板上生長的菌落與表 2 所列的菌落形態(tài)特征相符或疑似，且為革蘭陰性無芽孢桿菌，應進行確證試驗。

                             表2 大腸菌群菌落形態(tài)特征

確證試驗 從上述分離平板上挑選4～5個疑似菌落，分別接種于乳糖發(fā)酵管中，培養(yǎng) 24～48小時。若產酸產氣，判該膽鹽乳糖發(fā)酵管檢出大腸菌群，否則判未檢出大腸菌群。根據(jù)大腸菌群的檢出管數(shù)，按表3報告 1g 或lml供試品中的大腸菌群數(shù)。

                           表3 可能的大腸菌群數(shù)表

                       注∶+代表檢出大腸菌群;一代表未檢出大腸菌群。

2.梭菌檢查

取供試液 10ml（相當于供試品1g、lml）2份，其中1份置80℃保溫 10分鐘后迅速冷卻。上述 2份供試液直接或處理后分別接種至 100ml的新鮮庖肉培養(yǎng)基中。各培養(yǎng)基管在厭氧條件下培養(yǎng)72～96小時。如試驗管不出現(xiàn)渾濁、產氣、消化碎肉、臭氣等現(xiàn)象，判供試品未檢出梭菌;否則，應取上述培養(yǎng)物0.2m1，涂抹接種于含慶大霉素的哥倫比亞瓊脂培養(yǎng)基平板上，在厭氧條件下培養(yǎng) 48～72小時；若平板上無菌落生長，判供試品未檢出梭菌;若平板上有菌落生長，應挑選2~3個菌落分別進行革蘭染色和過氧化氫酶試驗。

過氧化氫酶試驗 取上述平板上的菌落，置潔凈玻片上，滴加3%過氧化氫試液，若菌落表面有氣泡產生，為過氧化氫酶試驗陽性，否則為陰性。

若上述可疑菌落為革蘭陽性梭菌，有或無卵圓形或球形的芽孢，過氧化氫酶陰性，判供試品檢出梭菌，否則判供試品未檢出梭菌。

結果判斷

供試品檢出控制菌或其他致病菌時，按一次檢出結果為準，不再復試。

供試品的**數(shù)、霉菌和酵母菌數(shù)其中任何一項不符合該品種項下的規(guī)定，應從同一批樣品中隨機抽樣，**復試兩次，以3次結果的平均值報告菌數(shù)。

眼用制劑檢出霉菌和酵母菌數(shù)時，須以兩次復試結果均不得長菌，方可判供試品的霉菌和酵母菌數(shù)符合該品種項下的規(guī)定。

若供試品的**數(shù)、霉菌和酵母菌數(shù)及控制菌三項檢驗結果均符合該品種項下的規(guī)定，判供試品符合規(guī)定;若其中任何一項不符合該品種項下的規(guī)定，判供試品不符合規(guī)定。